CLINIQUE AMBULATOIRE DES STERILISATIONS

vendredi 6 juillet 2012

PROTOCOLES D'ANESTHESIE

LES PROTOCOLES D'ANESTHESIE

Les médicaments utilisés dans nos protocoles assureront les trois piliers de l'anesthésie : perte de conscience, analgésie et relaxation musculaire. L'analgésie sera multimodale (alpha 2, opioïdes, lidocaïne, A.I.N.S.,) et annihilera en permanence les stimuli chirurgicaux douloureux.
La douleur est un élément "nuisible" aux conséquences morbides souvent sous-estimées mais dont l'incidence sur le système nerveux autonome et hormonal n'est plus à démontrer: perturbation de l'activité cardio-respiratoire et sécrétion des hormones de stress contrariant la cicatrisation, la récupération du patient et facilitant les complications infectieuses.
Les protocoles utilisés en C.A. assureront des chirurgies "stressfree".
Atteindre une profondeur d'anesthésie générale suffisante, s'y maintenir et assurer une surveillance clinique afin de détecter les modifications physiologiques en per-opératoire est un exercice difficile pour un étudiant.
Il devra avoir une connaissance théorique parfaite des protocoles et une observation fine tout au long de l'intervention des paramètres qui sont en relation avec la profondeur de l'anesthésie générale: la position de l'oeil, le réflexe palpébral et le tonus de la mâchoire principalement. Les fréquences cardiaque et respiratoire devront être également surveillées et leurs variations interprétées.

La position de l'oeil
L'oeil basculé en rotation vers le nez est le reflet d'une bonne anesthésie chirurgicale. Attention que chez le chat et la chatte, lors de l'induction à l'Alfaxalon il présente parfois un oeil qui reste central en permanence ce qui rend difficile pour l'étudiant l'interprétation de ce paramètre pouvant laisser supposer un mauvais dosage. Il devra dès lors se référer également aux autres paramètres pour apprécier la profondeur de l'anesthésie à sa juste valeur.
Le réflexe palpébral doit être disparu au stade chirurgical. Durant l'induction l'étudiant doit solliciter raisonnablement la paupière (attendre quelques secondes entre chaque provocation) au risque de voir le réflexe disparaitre sans nécessairement avoir la profondeur d'anesthésie voulue et dès lors en tirer des conclusions erronnées quant à la quantité de produit à injecter. Le réflexe palpébral restera positif tant que l'anesthésie est superficielle.
Le relâchement du tonus musculaire de la mâchoire est en relation également avec une profondeur d'anesthésie chirurgicale correcte. Cela permettra dès l'induction terminée d'intuber facilement le patient.
La fréquence cardiaque
Chez le chien elle est en relation avec la taille et le poids du patient variant de 60-80 battements / 1' pour un animal de 5 à 10 kg et de 30 à 60 battements / 1' pour un chien de plus de 25 kg.
Chez le chat elle oscille entre 110 et 120 battements par minute.
Attention que nos patients en SPA sont souvent stressés et que l'appréciation au stéthoscope d'une fréquence cardiaque "au repos" n'est pas facile.
La fréquence cardiaque en peropératoire sera monitorée grâce à un stéthoscope oesophagien. Avec l'utilisation de la Médétomidine, l'alpha 2 utilisé en prémédication dans nos protocoles , le patient sera bradycarde mais il n'y a pas de quoi s'alarmer, cette bradycardie peut être qualifiée de "normale", de même une éventuelle pâleur des muqueuses qui s'explique par la vacoconstriction artérielle périphérique. Cette vasoconstriction engendrera une hypertension et le coeur par réflexe vagal se fera bradycarde pour répondre à cette hypertension artérielle initiale mais cette bradycardie n'altére pas la fonction cardiovasculaire. La saturation artérielle en O2 reste bonne mais attention à une mauvaise interprétation de l'oxymètre de pouls qui est mis à sa disposition de l'étudiant car la vasoconstriction induite par la Médétomidine perturbe souvent l'interprétation de la SpO2.
Progressivement la fréquence cardiaque en cours d'intervention tend à se normaliser.
Si la bradycardie est trop forte ou se maintient trop longtemps : (CN de 5 à 10 : inférieure à 60 battements, CN de 10 à 20 kg : inférieure à 40 battements, CN de plus de 25 kg : inférieur à 30 battements, et ce après 15 minutes) une dose de Kétamine (1mg/kg IV) tachycardisante peut être administrée.
En clinique ambulatoire, excepté pour la castration des chats mâles, l'oxygénation grâce au circuit de Bain  (150 à 300 ml/kg/min avec un minimum de 1litre/min) et la fluidothérapie  assurant l'équilibre hydroélectrique du patient opéré seront systématiques.
L'utilisation d'un collyre pour humidifier l'oeil et le protéger est absolument indispensable dans le contexte d'une vasoconstriction périphérique et de la raréfaction des larmes.
L'activité respiratoire
Une respiration ample et régulière est le souhait de tout anesthésiste. Dans le contexte de la clinique ambulatoire l'étudiant assurera une oxygénation systématique et devra s'inquiéter des fréquences respiratoires anormales. Une respiration trop lente est souvent synonyme de patient trop fortement endormi, si c'est le cas ralentir la maintenance d'infusion et augmenter l'oxygénation du patient. A l'inverse une respiration trop rapide, pour peu que les voies respiratoires soient bien dégagées, fait penser à un patient trop superficiel. La perception de la douleur donnera parallèlement une tachycardie réactionnelle. Dans ce cas approfondir rapidement l'anesthésie par une maintenance plus soutenue, généralement double, ensuite injecter un complémént de Médétomidine à la dose de 10 µg/kg IV, ensuite rétablir l'infusion au débit prévu.
Lors de l'intubation l'étudiant vérifiera que sa sonde endotrachéale est bien positionnée et par la suite, en plus de l'observation des mouvements thoraciques, il observera le ballon du circuit de Bain pour vérifier l'activité respiratoire du patient.
La t° du patient. Dès la dépression des centres thermorégulateurs l'hypothermie s'installe. Dans le contexte de la clinique ambulatoire nous disposons d'une couverture de table pour isoler la patient et parfois d'un coussin chauffant (SPA de Charleroi). Attention que l'hypothermie diminue le métabolisme basal du patient et ses besoins en anesthésique. Dans ce contexte lorque l'intervention perdure l'étudiant devra faire preuve de vigilance et éventuellement réajuster ses dosages. En fin d'intervention il injectera systématiquement de l'Atipamézole (antidote de la Médétomidine) et placera le patient dans une cage de réveil avec couverture et lampe chauffante .

EVALUATION DES RISQUES

Il est certain que pour un étudiant inexpérimenté les risques d'accidents dus à l'anesthésie sont réels. En clinique ambulatoire l'évaluation des risques repose sur
  1. un examen général sérieux permettant de limiter les interventions aux seuls patients de type ASA 1 et 2 (en bonne santé ou présentant une pathologie non invalidante et non systémique)
  2. à la préparation minutieuse du matériel spécifique à l'intervention :
  • un plateau d'injection avec seringues marquées et aiguilles ad hoc
  • le nécessaire pour la cathétérisation et l'intubation
  • les baxters de maintenance et de fluidothérapie
  • le matériel de réanimation
  • les antagonistes spécifiques : Naloxone pour les Opiacés à la dose de 0,04 mg/kg IV, l'Atipamézole pour la Médétomidine à la 1/2 dose volume de l'alpha2 utilisé
  • les médicaments d'urgence habituels ( Adrénaline  à la dose de 10 µg/kg IV en cas d'hémorragie avec hypotension grave et la Dexaméthasone à la dose de 0,1 mg/kg IV en cas d'oedème aigu)
    3. l'observation permanente des paramètres d'interprétation de la profondeur    d'anesthésie.


    ERREURS A EVITER
    • mauvaise appréciation de l'état physiologique ou du poids du patient
    • confusion de flacon ou d'ampoule
    • erreur sur les modalités d'injection ( façon de prélèver le produit, sa dilution éventuelle, le choix de la voie d'injection, le choix de l'aiguille, l'appréciation exacte du dosage)
    • erreur dans la cathéterisation (faute d'asepsie, cathéter bouché ou mal fixé)
    • erreur dans l'intubation endotrachéale (sonde déficiente, mauvaise technique, erreur de lieu, traumatisme)
    • perfusion non conforme (dans le choix de la trousse, dans le débit, présence de bulles d'air)
    • monitoring erroné avec danger d'apnée ou à l'inverse de réveil.
    La Prémédication, l'Induction et la Maintenance
    Les protocoles d'anesthésie en clinique ambulatoire utilisant le principe de l'infusion à débit constant sont totalement injectables. 
    Les molécules et leurs posologies :

    La Médétomidine
    Alpha-2-agoniste, Inhibe la noradrénaline et produit une dépression du système nerveux central.
    Elle induit une sédation, une analgésie et une myorelaxation stable.
    En pratique la Médétomidine en prémédication sera injectée préférentiellement en IV mais en CA avec les animaux des SPA généralement nerveux cela n'est pas possible ,le produit s'injectera alors en IM.
    La Médétomidine détermine rapidement une bradycardie qu'on peut qualifier de "normale", sans danger pour nos patients jeunes ASA1 et ASA2
    opérés en SPA. Les doses préconisées sont de 10 à 40 µg/kg chez le chien et de 80 µg/kg chez le chat.
    En maintenance la Médétomidine sera
    utilisée en mélange avec l'Alfaxan, en infusion (perfusion continue) dans un baxter approprié de Na Cl.
    Si l'activité chirurgicale perdure, ce qui est souvent le cas avec les étudiants, il convient après 1 heure d'intervention de réinjecter un bolus IV de 10 µg/kg de Médétomidine pour  réapprofondir le patient.


    La Kétamine.
    Anesthésique dissociatif apportant une perte de conscience, une faible analgésie, mais pas de relaxation musculaire d'où sa combinaison avec le Diazépam dans certains protocoles d'induction (benzodiazépine psychotrope apportant une sédation légère et une relaxation musculaire).
    La Ketamine peut être utilisée à faible dose (1 mg/kg IV) dans notre protocole dans un contexte de bradycardie post alpha2-agoniste quand cette dernière perdure, afin de stimuler le coeur et déclencher une tachycardie réactionnelle.


    L'Alfaxalon
    Comme le Propofol, l'Alfaxalon est un anesthésique général qui donne une grande marge de sécurité. Il offre une très bonne stabilité cardio-respiratoire (le rythme cardiaque augmente temporairement et compense la diminution de fréquence induite par la Médétomidine)
    Il s'utilise souvent en complément de sédation IM avec la Médétomidine, seul en induction IV et  en maintenance dans un baxter d'infusion en mélange avec la Médétomidine.
    Lors de l'induction il est recommandé d'injecter le produit lentement en 4 phases  et d'arrêter l'injection dès que l'intubation est possible (après la phase 2,3 ou 4) afin de prévenir l'apnée réactionnelle, et de passer alors à l'infusion de maintenance.
    Chez le chien et la chienne, le complément de sédation se fera à la dose de 1 mg/kg IM, l'induction avec un maximum de 2 mg/kg en IV lente.

    Pour la maintenance le mélange d'infusion sera réalisé avec 80 ml de Na Cl + 200 mg d'Alfaxalon + 70 µg de Médétomidine et un débit pédiatrique de 1 gte/2 sec/10 kg.
    Chez le chat et la chatte, le complément de sédation se fera également avec 1mg/kg IM, l'induction avec 2 mg/kg en IV lente et pour la maintenance le mélange d'infusion sera de 88,8 ml de Na Cl + 112 mg d'Alfaxan + 30 µg de Médétomidine avec un débit pédiatrique de 1 gte/3sec/3 kg. Pour la castration du chat mâle, la maintenance se limitera à un bolus supplémentaire de 1 mg/kg IV 20' après le temps d'induction.

    L'association de l'Alfaxan avec la Médétomidine en perfusion continue permet en clinique ambulatoire d'assurer une anesthésie profonde, stable, pour des interventions "douloureuses" et de longue durée, réalisées par des étudiants peu habitués à l'acte chirurgical.

    Il est à noter que la profondeur de l'anesthésie lors de l'induction IV, quelque soit la molécule choisie, doit être monitorée car l'action est parfois lente même par voie veineuse et des réactions d'apnée sont courantes.
    Tous nos patients sont, non seulement cathétérisés, mais également intubés. Cette précaution est absolument indispensable.
    Si l'apnée réactionnelle perdure l'étudiant utilise un ambu-bag et ventile raisonnablement l'animal 5 à 10 x/min, l'animal reprend généralement sa respiration spontanément et rapidement. Il faut se souvenir du volume courant 10 à 15 ml/kg et utiliser l'ambubag approprié sans "surgonfler" le patient au risque de faire éclater ses alvéoles pulmonaires. Si l'apnée perdure utiliser le circuit de Bain raccordé à la bonbonne d'O2 (le volume minute est de 150 à 300 ml/kg/min) et ventiler : la VPPI ou ventilation à pression positive intermittente manuellement avec un circuit de Bain se fait en fermant la valve d'évacuation des gaz, le ballon se gonfle, chasser l'air dans les poumons en pressant sur le ballon, ouvrir la valve pour laisser évacuer les gaz puis recommencer à raison de 5 à 10 fois par minute. En cas d'apnée "rebelle" en plus de la VPPI avoir recours à l'injection IV de Doxapram à la dose de 5 mg/kg IV. Le Dxapram est un stimulateur des centres respiratoires centraux.


    La Buprénorphine
    Opioïde analgésiant.
    Il s'injecte par voie IV durant la prémédication, à la dose de 20 µg/kg.


    L'Acide Tolfénamique.
    AINS. Antiinflammatoire mais également analgésiant.
    Il s'injectera par voie IV également durant la prémédiaction à la dose de 4 mg/kg.

    La Lidocaïne.

    Anesthésique local. Utilisé pour fournir un complément d'analgésie peropératoire et permettre ainsi de réduire les quantités d'anesthésiques généraux. Utiliser 2 mg/kg pourl'imbibition du pédicule ovarien ou l'infiltration de la ligne d'incision cutanée préscrotale et l'injection dans les testicules.
    Eviter l'injection IV de lidocaïne car il y a danger d'hypotension.
    A noter que la lidocaïne est utilisé également pour l'intubation (déposer quelques gouttes de produit sur les cordes vocales).

    L'Atipamézole.
    Antidote de la Médétomidine, il neutralise son activité.
    Injecter la 1/2 dose volume de la Médétomidine totale utilisée durant l'anesthésie.

    PROTOCOLES
    Le dosage des différents produits est renseigné à titre indicatif pour des animaux des SPA généralement nerveux mais il est évident que chaque patient est un cas particulier et que des variations parfois importantes peuvent se justifier lors de la mise en application des protocoles en fonction de divers paramètres.

    1. CASTRATION DU CHAT

    <!--[endif]-->

    PREMEDICATION
    La sédation du chat mâle se fera par une injection de Médétomidine par voie IM à la dose de 80 µg/kg et de 1 mg/kg d'Alfaxalone IM également.

    Utiliser 2 seringues différentes afin d'éviter les erreurs de dosage.
    Attendre 15' tout en préparant le matériel
    Poser un cathéter
    Flusher avec du Na Cl

    Injecter 20 µg/kg IV de Buprénorphine et flusher
    Injecter 4 mg/kg IV d'Acide Tolfénamique  et flusher
    Injecter 15 mg/kg SC d'Amoxicilline
    Appliquer le collyre et vider les glandes anales.
    Epiler les testicules et désinfester une première fois le site opératoire
    Injecter dans les testicules 2 mg/kg de Lidocaïne.
    Positionner correctement l'animal et réaliser l'asepsie parfaite du site opératoire

    INDUCTION et MAINTENANCE
    2 mg/kg IV maximum d'Alfaxalon à l'effet
    Intubation et pose d'un stéthoscope oesophagien
    Temps opétaroire (cf. techniques de stérilisation : http://www.vanhoff.be/ulg/slideshow/TECHNIQUEDESSTERILISATIONS2012.pdf
    20' plus tard injecter 1 mg/kg IV d'Alfaxalon pour réapprofondir le patient si nécessaire
    En fin d'intervention injecter de l'Atipamézole à la 1/2 dose volume de la Médétomidine par voie IM.
    Positionner le chat dans la cage de réveil sous une lampe chauffante.

    2. CASTRATION DU CHIEN

    PREMEDICATION
    La sédation du chien se fera par une injection de Médétomidine  par voie IM à la dose de 10 à 40 µg/kg  et de 1 mg/kg d'Alfaxalon IM également.
    Utiliser 2 seringues différentes pour éviter les erreurs de posologie.
    Attendre 15' tout en préparant le matériel
    Poser un cathéter
    Flusher avec du Na Cl

    Injecter 20 µg/kg IV de Buprénorphine  et flusher
    Injecter 4 mg/kg IV d'Acide Tolfénamique  et flusher
    Injecter 15 mg/kg SC d'Amoxicilline
    Appliquer le collyre
    Désinfester une première fois le site opératoire.
    Infiltrer la ligne d'incision préscrotale et injecter 2 mg/kg de Lidocaïne dans les testicules.

    INDUCTION
    Alfaxalon à la dose de 2 mg/kg maximum en IV lente, à l'effet.
    Intubation.
    Positionner correctement l'animal et réaliser l'asepsie parfaite du site opératoire;

    MAINTENANCE
    Connecter au cathéter le raccord à 3 voies reliant la trousse du baxter d'infusion ( 80 ml de Na Cl, 200 mg d'Alfaxalone et 70 µg de Médétomidine, débit de 1 gtte pédiatrique/2sec/10kg soit 3 ml/kg/h) et la trousse du Hartmann (7 ml/kg/h).
    Assurer les débits corrects d'infusion et de réhydratation en fonction du poids du patient.
    Poser le stéthoscope oesophagien et le pulse-oxymètre.
    Raccorder le circuit de Bain (150 à 300 ml/kg/min) au tube endo-trachéal.


    Temps opétaroire (cf. techniques de stérilisation :
    Si l'intervention perdure après 60', il convient de réinjecter un bolus Médétomidine à la dose de 10 µg/kg IV pour approfondir le patient.


    En fin d'intervention injecter IM l'Atipamézole  à la 1/2 dose volume de la Médétomidine injectée durant l'opération.
    Positionner le chien dans sa cage de réveil sous une lampe chauffante.


    3. OVARIECTOMIE ET OVARIOHYSTERECTOMIE DE LA CHATTE


    PREMEDICATION
    La sédation de la chatte se fera par une injection de Médétomidine par voie IM la dose de 80 µg/kg et de 1 mg/kg d'Alfaxalon IM également.

    Utiliser 2 seringues différentes pour éviter les erreurs de posologie.
    Attendre 15' tout en préparant le matériel
    Poser un cathéter

    Flusher avec du Na Cl
    Injecter 20 µg/kg IV de Buprénorphine et flusher
    Injecter 4 mg/kg IV d'Acide Tolfénamique et flusher 
    Injecter 15 mg/kg SC d'Amoxicilline

     Appliquer le collyre
    Tondre et désinfecter une première fois le site opératoire

    INDUCTION
    Injecter l'Alfaxalon à la dose de 2 mg/kg en IV lente à l'effet.
    Intubation 
    Positionner correctement l'animal et réaliser l'asepsie parfaite du site opératoire

    MAINTENANCE
    Connecter au cathéter le raccord à 3 voies reliant la trousse du baxter d'infusion 
    (88,8 ml de Na Cl, 112 mg d'Alfaxalone et 30 µg de Médétomidine, débit de 1goutte pédiatrique/3sec/3kg soit 6,7 ml/kg/h) et la trousse du Hartmann (3,3 ml/kg/h).
    Assurer les débits corrects d'infusion et de réhydratation en fonction du poids du patient.
    Poser le stéthoscope oesophagien et le pulse-oxymètre.
    Raccorder le circuit de Bain (150 à 300ml/min) au tube endo-trachéal.

    Temps opétaroire (cf. techniques de stérilisation :
    http://www.vanhoff.be/ulg/slideshow/TECHNIQUEDESSTERILISATIONS2012.pdf
    L'anesthésiste déposera 2 mg/kg de Lidocaïne sur les pédicules ovariens.

    Si l'intervention perdure après 60', il convient de réinjecter un bolus de Médétomidine à la dose de 10 µg/kg IV pour approfondir le patient.


    En fin d'intervention injecter de l'Atipamézole  à la 1/2 dose volume de la Médétomidine, par voie IM.
    Positionner la chatte dans sa cage de réveil sous une lampe chauffante.


    4. OVARIECTOMIE ET OVARIOHYSTERECTOMIE DE LA CHIENNE

    PREMEDICATION
    La sédation de la chienne se fera par une injection de Médétomidine par voie IM à la dose de 10 à 40 µg/kg en fonction du poids de l'animal et de 1 mg/kg d'Alfaxalone IM également.
    Utiliser 2 seringues différentes afin d'éviter les erreurs de posologie.
    Attendre 20' tout en préparant le matériel
    Poser un cathéter

    Flusher avec du Na CL
    Injecter 20 µg/kg IV de Buprénorphine et flusher
    Injecter 4 mg/kg IV d'Acide Tolfénamique
     et flusher 
    Injecter 15 mg/kg SC d'Amoxicilline 
    Appliquer le collyre
    Tondre et désinfecter une première fois le site opératoire

    INDUCTION
    Injecter l'Alfaxalon à la dose de 2 mg/kg par voie Iv lente à l'effet.
    Intubation 
    Positionner correctement l'animal et réaliser l'asepsie parfaite du site opératoire.

    MAINTENANCE
    Connecter au cathéter le raccord à 3 voies reliant la trousse du baxter d'infusion ( 80 ml de Na Cl, 200 mg d'Alfaxalone et 70 µg de Médétomidine, débit de 1 gtte pédiatrique/2sec/10kg soit 3 ml/kg/h) et la trousse du Hartmann (7 ml/kg/h).
    Assurer les débits corrects d'infusion et de réhydratation en fonction du poids du patient.

    Poser le stéthoscope oesophagien et le pulse-oxymètre.
    Raccorder le circuit de Bain (150 à 300ml/min) au tube endo-trachéal.

    Temps opétaroire (cf. techniques de stérilisation :
    L'anesthésiste déposera 2 mg/kg de Lidocaïne sur les pédicules ovariens.


    Si l'intervention perdure après 60', il convient de réinjecter un bolus de Médétomidine à la dose de 10 µg/kg IV pour approfondir le patient.


    En fin d'intervention injecter de l'Atipamézole IM à la 1/2 dose volume de la Médétomidine injectée durant l'intervention.
    Positionner la chienne dans sa cage de réveil sous une lampe chauffante.






















    LES PRELIMINAIRES

    <!--[if !supportLists]-->Une parfaite connaissance théorique des protocoles d'anesthésie et des techniques de stérilisation est indispensable pour une participation efficace à la clinique ambulatoire.La mise en pratique des connaissances de l'étudiant sera évaluée et fera l'objet d'une cote intervenant dans le processus de délibération de fin d'année.
    HORAIRE.
    La ponctualité est de rigueur. Les départs vers les sites de Charleroi, Verviers et St Trond se feront à 7h30 précise mais les étudiants sont priés de se présenter dès 7h15 à l’entrée des locaux TP 1è doc, côté sous-sol pour aider au chargement du véhicule de transport.
    7h15


    Au retour les étudiants aideront au déchargement du matériel, au reconditionnement et à la stérilisation des instruments.
    Lundi : un groupe d'étudiants avec le véhicule facultaire,départ de la faculté à 7h30, retour vers 18h00SPA de Charleroi – Dr VANHOFF
    Mardi : un groupe d'étudiants avec le véhicule facultaire,départ de la faculté à 7h30, retour vers 14h00SPA de Verviers – Dr VANHOFF
    Mardi matin également : un autre groupe d'étudiants se rend par ses propres moyens à St Nicolas, rue Bois St Gilles, activité sur place de 8h30 à 12h30 – SPA de Cointe (Liège) Dr GUIOT
    Mercredi : un groupe d'étudiants se rend par ses propres moyens,à St Georges-s-Meuse, 4 rue Reine Astrid,activité sur place de 8h30 à 12h30 – Dr SAVONET
    Jeudi : un groupe d'étudiants avec le véhicule facultaire,départ de la faculté à 7h30, retour vers 14h00SPA de St Trond – Dr VANHOFF
    <!--[if !supportLists]--> Vendredi : un groupe d'étudiants se rend par ses propres moyens
    à St Nicolas, rue Bois St Gilles, activité sur place de 8h30 à 12h30 – SPA de Cointe (Liège) – Dr GUIOT
    Chaque étudiant doit se présenter à la clinique ambulatoire avec son matériel complet :
    bic, vade-mecum, stéthoscope, thermomètre, paire de ciseaux, tenue impeccable (tablier blanc, veste et pantalon de chirurgien) muni le lundi de son casse-croûte pour la journée.
    Dès que les étudiants ont déchargé le matériel dans le site, ils se mettent en tenue de travail. Les groupes cliniques sont formés et les patients choisis. Après examen chaque groupe clinique prépare son plateau d'injection .
    Dans chaque groupe, l'étudiant anesthésiste est le coordinateur.

    L'anesthésiste est responsable de la fiche clinique où il notifie les renseignements se rapportant aux produits injectés ainsi que les paramètres physiologiques enregistrés. Il doit déterminer en permanence la profondeur de l'anesthésie et la réaction physiologique de l'animal; à cet effet il est très important que le patient soit correctement positionné avec la tête bien visible et facilement accessible, les avant-bras dégagés pour accéder au cathéter et à la perfusion. L'anesthésiste surveillera l'état des muqueuses et le temps de remplissage capillaire, le réflexe palpébral et le tonus de la mâchoire, la position de l'oeil et son humidification.
     Il disposera d'un stéthoscope oesophagien et d'un oxymètre de pouls qu'il devra correctement positionner et monitorer.

    EXAMEN GENERAL
    Avant toute intervention le patient sera pesé et examiné afin d’écarter les animaux malades ou déjà stérilisés. Les renseignements sont notés sur la fiche clinique.
    PENDANT L'INTERVENTION
    L'anesthésiste assure le protocole de l'anesthésie et la surveillance de son patient. Le chirurgien opére et renseigne l'anesthésiste sur tous les évènements nécessitant une éventuelle intervention de sa part: pertes sanguines, stimuli nerveux, etc... Une opération est un travail d'équipe où la communication entre les partenaires est absolument indispensable.
    EN FIN D'INTERVENTION
    Les étudiants signalent les points particuliers nécessitant un suivi pour les vétérinaires du site.
    Ils positionnent le patient dans sa cage sous lampe chauffante et s'assurent de la bonne évolution de son réveil.
    ENCADREMENT DES ETUDIANTS
    Le vétérinaire encadrant supervise l'activité des étudiants et vérifie les fiches cliniques. Il assure le bon déroulement des interventions mais n’intervient personnellement qu’en cas de difficulté majeure ou d’absolue nécessité. Les étudiants se doivent de suivre fidèlement les directives qu'ils reçoivent.
    RANGEMENT
    Après l'opération, les étudiants seront vigilants de jeter aiguilles et lames dans un container approprié. Les papiers, champs, compresses usagées, déchets tissulaires, et poils iront dans un sac poubelle unique trié ultérieurement . Les étudiants nettoient les instruments, réorganisent les boîtes et désinfectent les tables.
    <!--[if !vml]--><!--[endif]-->
    <!--[if !supportLists]--> MATERIEL
    Au retour les étudiants aident au déchargement du matériel ambulatoire, à la stérilisation des boîtes d'instruments, des sondes endotrachéales, des stéthoscopes oesophagiens et au réapprovisionnement des produits et disposables utilisés.

    ASEPSIE DU SITE OPERATOIRE

    CASTRATION DU CHAT
    Les testicules sont épilés et désinfectés. Un champ stérile est posé sur le scrotum
    CASTRATION DU CHIEN
    Tonte et asepsie de l’abdomen caudal et du scrotum
    Un champ stérile est posé autour de la région ante-scrotale, le scrotum restant sous le champ
    OVARIO CHIEN ET CHAT
    L’abdomen est largement tondu et désinfecté
    Un champ stérile troué protège le site opératoire
    PREPARATION DU CHIRURGIEN
    Bonnet, masque et gants stériles pour chaque intervention. Une casaque stérile pour l'ovario de la chienne, de la chatte et la castration du chien.

    TECHNIQUE D’INJECTION ET DE CATHETERISATION
    Les aiguilles seront choisies en fontion de la viscosité du produit à injecter, de l'épaisseur du tissu et de la modalité d'injection .
    Les seringues seront utilisées au prorata des quantités injectées. Avec des quantités infinitésimales il convient de diluer correctement le produit.

    Les modalités d'injection.
    INJECTION SC
     Sous la peau du cou, du thorax ou du dos. Dégraisser, faire un pli de peau, introduire l’aiguille entre les doigts, légère aspiration du piston pour éviter l’IV puis injecter. Utiliser généralement une aiguille 23 ou 25G ; pour l'injection SC du Clamoxyl très huileux utiliser une aiguille 21G .<!--[if !supportLists]-->
    INJECTION IM
     Au niveau des lombes ou du quadriceps. Dégraisser, légère aspiration du piston pour éviter l’IV, puis injecter. Utiliser une aiguille 23G courte ou longue suivant le site d'injection et l'état adipeux du patient.
    INJECTION IV
     Dans la veine céphalique ou la veine saphène externe. Désinfecter avec soin. Chasser l’air de la seringue et injecter lentement. Utiliser une aiguille 23 ou 21G courte.

    La Cathétérisation.
    Choisir correctement son cathéter (24G  pour les chats et chattes, 22G  pour les petits chiens, 20G ou 18G pour les chiens et chiennes de taille moyenne et grande taille. Respecter les règles d'asepsie et la rigueur de la méthode de placement.


    PERFUSION PER-OPERATOIRE DU PATIENT
    La maintenance per-opératoire durant la première heure de chirurgie est normallement de 1 goutte/sec/10kg soit 180 ml (1ml = 20 gouttes).
     Avec les alpha2 agonistes, le débit sera par prudence réduit de 1/2 : 1 goutte/2sec/10 kg soit 90 ml car la médétomidine induit une vasoconstriction avec hypertension et par réflexe vagual une bradycardie. 
    L'étudiant aura à coeur de calculer correctement sa maintenance opératoire; intensifier l'hypertension par un débit trop important pourrait avoir des conséquences fâcheuses sur le rythme cardiaque; à contrario des pertes sanguines non compensées déterminent une diminution de la pression sanguine et lorsqu'elles sont importantes elles peuvent déterminer un choc hypovolémique si 20% du volume circulant est atteint.
    Pour faire simple disons qu'un animal de 10 kg a besoin de +/- 100 ml durant l'heure de chirurgie (temps généralement nécessaire à l'étudiant pour son travail de stérilisation)
    soit +/- 10 ml de soluté par kg.
    Rappelons que le volume circulant du chien est de 80 ml de sang/kg et celui du chat de 60 ml/kg.

    LES SUTURES
    Les complications les plus courantes proviennent de sutures mal faites de la paroi abdominale entrainant hernie et éventration et des hémorragies au niveau des ligatures du pédicule ovarien mal ligaturé ou du cordon ou de la vaginale.
    Attention de bien choisir son fil et de pouvoir justifier son choix. Les fils mis à la disposition des étudiants sont les polydioxanon, polyglactin910, et le polyglecaprone.
    L'étudiant doit se remémorer les différentes sutures (noeuds, points, surjets et transfixions) auxquels il va être confronté. Cfr. notes des TP de 1er GMV à l'adresse web :www.vanhoff.be/ulg/blogs/sutures/index.html

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    PHOTOS DE LA CLINIQUE AMBULATOIRE DES STERILISATIONS







    Les photos sont désormais publiées sur la page Facebook 
    "Clinique ambulatoire Faculté vétérinaire ULg
    à l'adresse "http://ulg.vanhoff.be/fb"






























    TECHNIQUES DE STERILISATION

    Un montage power point reprenant l'ensemble des techniques chirurgicales de stérilisation données au cours du Dr Annick HAMAIDE est mis à la disposition des étudiants sur le site : 

    http://www.vanhoff.be/ulg/slideshow/TECHNIQUEDESSTERILISATIONS2012.pdf